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核酸電泳的步驟及實驗方法介紹2024動態(tài)已更新《采購/推薦》
閱讀次數(shù):15306 發(fā)布時間:2024/1/8 9:18:26
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  核酸電泳的步驟及實驗方法介紹
 

  核酸電泳是進行核算研究的重要手段,常用于瓊脂糖凝膠和聚丙烯酰胺凝膠兩種,凝膠電泳操作簡單,是分離鑒定和純化核算的一種常用方法,那么核酸電泳的步驟有哪些的呢?

  瓊脂糖凝膠電泳的步驟:

  用透明膠將玻璃板或電泳裝置所配備的塑料盤的邊緣圈封,制成膠模,置水平工作臺上;

  (2) 稱取適量瓊脂糖,置電泳緩沖液中,加熱使瓊脂糖溶解;

  (3) 待溶液冷至60℃,加入10mg/ml EB貯存液,使終濃度達0.5mg/ml;

  (4) 在距離膠模底板0.5-1mm處放置電泳梳,將瓊脂糖溶液倒入膠模中,厚度約3-5mm,注意避免產(chǎn)生氣泡;

  (5) 凝膠凝固后,移去梳子和透明膠,將凝膠放入電泳槽。加入TBE緩沖液使恰好沒過膠面約1mm;

  (6) 將DNA樣品與1/6體積加樣緩沖液混合后,加入樣品槽中;

  (7) 接通電源,使樣品槽在負(fù)端,用1-5v/cm的電壓,電泳適當(dāng)時間;

  (8) 電泳結(jié)束后,可將含EB的凝膠直接放在紫外線檢測儀上觀察,并拍照記錄,也可將不含EB的凝膠在0.5μg/ml的EB溶液中染色30-45分鐘,再如上觀察和拍照,記錄結(jié)果。

  聚丙烯酰胺凝膠電泳的步驟:

  (1) 配制試劑

  ① 30%丙烯酰胺:100ml雙蒸水中含29g丙烯酰胺和1g N,N’-亞甲雙丙烯酰胺。

 、 5×TBE 每升溶液含54g Tris.HCl,27.5g硼酸和20ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0)。

 、 10%過硫酸銨:10ml雙蒸水中含1g過硫酸銨。

  (2) 裝置膠!⒉AО搴蛪|條事先用去污劑刷洗,并經(jīng)自來水和無離子水沖洗干凈,晾干。裝置時,將較大的玻璃板平放在工作臺上,將兩個墊條放在玻璃板兩側(cè),涂上少量凡士林,并將上層玻璃板置于墊條上,用夾子將玻板連同墊條夾緊,底部用1%瓊脂糖密封。為防止漏膠,除放梳子一邊外,其余三邊應(yīng)用防水膠帶密封。

  (3) 根據(jù)玻璃板大小及夾層厚薄計算所需凝膠溶液量,按表配制溶液(100ml)。

  濃度 3.5 5.0 8.0 12.0 20.0

  30%丙烯酰胺(ml) 11.6 16.6 26.6 40.6 66.6

  水(ml) 67.7 62.7 52.7 39.3 12.7

  5×TBE(ml) 20.0 20.0 20.0 20.0 20.0

  10%過硫酸銨(ml) 0.7 0.7 0.7 0.7 0.7

  將35μl TEMED加入100ml混合液中,混勻,然后均勻連續(xù)注入兩玻璃板空隙中。

  (4) 立即插入電泳梳,勿使梳齒下形成氣泡。

  (5) 室溫聚合1小時,梳齒下出現(xiàn)折光帶時,表明聚合反應(yīng)已經(jīng)完成。若凝膠不立即使用,可用紗布或濾紙(用1×TBE浸泡)包蓋于凝膠頂部,置4℃保存1-2天。

  (6) 拔去梳子,立即用水沖洗加樣孔。

  (7) 除去底部膠帶,將凝膠直立放入電泳槽。在上下兩槽中灌好1×TBE溶液,驅(qū)盡凝膠底部附著的氣泡。并用1×TBE溶液沖洗加樣孔;

  (8) 將核酸樣品與適量6×凝膠加樣緩沖液(見表2-28)混合,并加入凝膠加樣孔中;

  (9) 接通電源,正與下槽連接。電壓一般控制在1.8v/cm。電壓過高時凝膠產(chǎn)生的熱量可造成DNA區(qū)帶彎曲,甚至引起小DNA段的解鏈;

  (10) 電泳畢,取下玻板和凝膠,放在工作臺上,從夾層一角輕撬,將上面的玻板輕輕移開,并小心揭下凝膠,置染色液中染色并進行結(jié)果觀察。

  注:以上資料僅供參考!

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